МИНИСТЕРСТВО ПРИРОДНЫХ РЕСУРСОВ И ЭКОЛОГИИ
РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Федеральная служба по гидрометеорологии и мониторингу
окружающей среды (Росгидромет)

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТОДОВ БИОТЕСТИРОВАНИЯ
ВОДЫ И ДОННЫХ ОТЛОЖЕНИЙ
ВОДОТОКОВ И ВОДОЕМОВ

Ростов-на-Дону
2017

Предисловие

1 РАЗРАБОТАН Федеральным государственным бюджетным учреждением «Гидрохимический институт» (ФГБУ «ГХИ»)

2 РАЗРАБОТЧИКИ А.М. Никаноров, чл.-.корр. РАН (руководитель разработки); Т.А. Хоружая, д-р. биол. наук (ответственный исполнитель); Е.Н. Бакаева, д-р. биол. наук, Л.М. Предеина, канд. хим. наук, Н.А. Мартышева

3 СОГЛАСОВАН с Федеральным государственным бюджетным учреждением «Научно-производственное объединение «Тайфун» (ФГБУ «НПО «Тайфун») 11.09.2017 и Управлением мониторинга загрязнения окружающей среды, полярных и морских работ (УМЗА) Росгидромета 22.11.2017

4 УТВЕРЖДЕН Руководителем Росгидромета 23.11.2017

ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ приказом Росгидромета от 10.01.2018 от № 2

5 ЗАРЕГИСТРИРОВАН ФГБУ «НПО «Тайфун» от 04.12.2017 за номером РД 52.24.868-2017

6 ВЗАМЕН Р 52.24.566-94 «Методы токсикологической оценки загрязнения пресноводных экосистем»

7 СРОК ПЕРВОЙ ПРОВЕРКИ 2023 год ПЕРИОДИЧНОСТЬ ПРОВЕРКИ 5 лет

СОДЕРЖАНИЕ

Введение

Число загрязняющих веществ, поступающих в водоемы и водотоки, постоянно растет, а контроль токсичных компонентов недостаточен из-за трудностей их аналитического определения, невозможности учета их суммарных эффектов и процессов трансформации в водной экосистеме. Наиболее приемлемым выходом из создавшейся ситуации является введение в практику государственного мониторинга состояния и загрязнения окружающей среды в части поверхностных вод водных объектов методов биотестирования токсичности - интегральной оценки токсичности воды и донных отложений. Данные биотестирования должны использоваться в комплексе с данными биоиндикации и химического анализа, что позволяет получить наиболее полную оценку эколого-токсикологического состояния водных объектов.

Методология биотестирования изначально относилась к компетенции специалистов по водной токсикологии, однако в настоящее время применяется в мировой практике экологами и гидробиологами широкого профиля. Во многих странах биотестирование стало необходимым элементом системы охраны поверхностных вод, обеспеченным нормативами качества воды.

Наблюдения за токсичностью поверхностных вод на основе биотестирования в мониторинге Росгидромета предусмотрены РД 52.24.309. Предложено значительное число новых и усовершенствованных методов биотестирования воды и донных отложений (биотестов), разработаны различные нормативно-методические документы. Последние, однако, многоцелевого назначения (предназначены для тестирования воды, вытяжки из почв, осадков сточных вод, донных отложений и отходов), в связи с чем они не позволяют учитывать особенности биотестирования поверхностных вод.

В настоящий руководящий документ вошли актуализированные и наиболее апробированные и перспективные для мониторинга поверхностных вод водных объектов современные биотесты на гидробионтах разных систематических групп: водорослях, ракообразных, инфузориях, коловратках, рыбах, а также на популяциях гидробионтов.

Важными представляются вопросы выбора метода биотестирования и необходимости использования набора биотестов. Биотестирование на наборе из нескольких биотестов, благодаря различной чувствительности тест-объектов к загрязняющим веществам, позволяет с большей надежностью уловить присутствие в воде или донных отложениях веществ, обуславливающих токсичность. В набор биотестов должны быть включены специально выделенные в руководящем документе «основные методы биотестирования»; в них используются тест-объекты, наиболее широко применяемые в мировой и отечественной практике.

В группу «дополнительных» вошли методы, которые не являются обязательными, но могут быть также включены в набор биотестов.

Особое внимание уделено экспресс-методам, позволяющим получить результат за короткое время (от 2 до 6 ч).

Результаты определения токсичности проб воды с помощью биотестирования дают возможность оценить качество воды по токсичности и перейти к общей оценке токсического загрязнения водного объекта или его участка.

В связи с актуальностью проблемы эвтрофирования водоемов, цветения сине-зеленых водорослей и токсичности их метаболитов в руководящий документ включен метод биотестирования токсического влияния фитоценоза планктона на формирование качества воды.

РУКОВОДЯЩИЙ ДОКУМЕНТ

Дата введения - 2018-10-01

1 Область применения

Настоящий руководящий документ устанавливает методы биотестирования воды и донных отложений водотоков и водоемов, оценки качества воды по токсичности и токсическому загрязнению.

Настоящий руководящий документ предназначен для подразделений Росгидромета, осуществляющих организацию и проведение наблюдений за состоянием поверхностных вод, а также для использования природоохранными организациями, выполняющими мониторинг состояния и загрязнения окружающей среды.

2 Нормативные ссылки

В настоящем руководящем документе использованы нормативные ссылки на следующие нормативные документы:

ГОСТ 31861-2012 Вода. Общие требования к отбору проб

ГОСТ Р 54496-2011 (ИСО 8692:2004) Вода. Определение токсичности с использованием зеленых пресноводных одноклеточных водорослей

ГОСТ Р 56236-2014 (ИСО 6341:2012) Вода. Определение токсичности по выживаемости пресноводных ракообразных Daphnia magna Straus

Р 52.24.662-2004 Оценка токсического загрязнения природных вод и донных отложений пресноводных экосистем методами биотестирования с использованием коловраток

Р 52.24.690-2006 Оценка токсического загрязнения вод водотоков и водоемов различной солености и зон смешения речных и морских вод методами биотестирования

Р 52.24.695-2007 Оценка токсического загрязнения природных вод и донных отложений водных экосистем по коэффициенту регенерации популяции

Р 52.24.741-2010 Оценка токсичности поверхностных вод суши в условиях чрезвычайных ситуаций методом экспрессного биотестирования

Р 52.24.763-2012 Оценка состояния пресноводных экосистем по комплексу химико-биологических показателей

Р 52.24.809-2014 Методы оценки токсического влияния фитоценозов планктона на формирование качества поверхностных вод суши

РД 52.24.309-2016 Организация и проведение режимных наблюдений за состоянием и загрязнением поверхностных вод суши

РД 52.24.609-2013 Организация и проведение наблюдений за содержанием загрязняющих веществ в донных отложениях водных объектов

РД 52.24.635-2002 Методические указания. Проведение наблюдений за токсическим загрязнением донных отложений в пресноводных экосистемах на основе биотестирования

РД 52.24.670-2005 Унифицированный метод определения острой токсичности проб поверхностных вод суши, содержащих взвешенные вещества

Примечания

1 Ссылки на остальные нормативные документы приведены в разделах 7, В.1 (приложение В).

2 При пользовании настоящим руководящим документом целесообразно проверять действие ссылочных нормативных документов:

- национальных стандартов - в информационной системе общего пользования - на официальном сайте национального органа Российской Федерации по стандартизации в сети Интернет или по ежегодно издаваемому информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по соответствующим ежемесячно издаваемым информационным указателям, опубликованным в текущем году;

- нормативных документов Росгидромета и типовых нормативных документов - по РД 52.18.5 и дополнений к нему - ежегодно издаваемым информационным указателям нормативных документов.

3 Если ссылочный нормативный документ заменен (изменен), то при пользовании настоящим руководящим документом следует руководствоваться замененным (измененным) нормативным документом. Если ссылочный нормативный документ отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

3 Термины и определения

В настоящих рекомендациях введены и применены следующие термины с соответствующими определениями:

3.1 биологическая индикация воды (биоиндикация): Оценка качества воды по наличию водных организмов, являющихся индикаторами ее загрязненности или трофности.

3.2 биологическое тестирование воды или донных отложений (биотестирование): Метод оценки качества воды или донных отложений по их токсичности на основе анализа ответных реакций тест-объектов (гидробионтов) в токсикологическом эксперименте.

3.3 водный объект: Природный или искусственный водоем, водоток либо иной объект, постоянное или временное сосредоточение вод в котором имеет характерные формы и признаки водного режима [1].

3.4

3.5

3.6 выживаемость тест-объекта: Способность тест-объектов сохранять жизнедеятельность при воздействии токсичных химических веществ, токсичной воды или донных отложений в токсикологическом эксперименте.

3.7 гидробионты: Все живые организмы, животные и растительные, развивающиеся и существующие в воде и донных отложениях водоемов и водотоков [2].

3.8 гидробиологические показатели качества воды: Показатели качества воды, определяемые по состоянию гидробионтов [2].

3.9

3.10

3.11

3.12 критерий токсичности: Значение показателя токсичности, на основании которого судят о наличии токсического действия.

3.13 «нативная» проба донных отложений: Проба донных отложений без какой-либо дополнительной предварительной обработки.

3.14

3.15 острое токсическое действие; ОТД: Воздействие, при котором критерий токсичности по ответной реакции тест-объекта достигается за относительно короткий промежуток времени (от нескольких минут до 4 сут в зависимости от биологических особенностей вида тест-объекта).

3.16 питательная среда: Смесь дистиллированной (деионизированной) воды и питательных веществ, которая используется для культивирования водорослей и приготовления контрольной пробы (ГОСТ Р 54496).

3.17 подострое токсическое действие; пОТД: Воздействие, при котором критерий токсичности по ответной реакции тест-объекта достигается за более длительный промежуток времени, чем ОТД. Экспозиция для выявления пОТД составляет от 2 до 7 сут в зависимости от биологических особенностей вида тест-объекта.

3.18 популяция: Совокупность особей одного вида с общим генофондом, в течение большого числа поколений населяющих определенное пространство с относительно однородными условиями обитания. Популяция имеет сложную, обычно самоподдерживающуюся структуру; ее разделяют по полу, возрасту, пространственным и близкородственным объединениям особей [3].

3.19 плодовитость: Показатель размножения тест-объектов в токсикологическом эксперименте.

3.20

3.21 показатели токсичности (токсикологические показатели): Показатели, на основании которых делают выводы о вредном действии вещества или загрязненной воды для водного организма.

3.22 проба воды: Количество воды, предназначенное для исследования.

3.23 регенерация популяции: Показатель восстановления популяции по соотношению молоди и погибших особей.

3.24 скорость осветления среды; СОС: Объем среды, который осветляется одной коловраткой в единицу времени при потреблении микроводорослей.

3.25 створ пункта наблюдений: Условное поперечное сечение водоема или водотока, в котором производят комплекс работ для получения данных о показателях качества воды [2].

3.26 тестируемая проба: Проба воды или донных отложений, в которой определяется токсичность при биотестировании.

3.27 тест-объект: Организм или популяция организмов, используемых для установления токсичности воды или донных отложений при биотестировании.

3.28 тест-реакция: Реакция тест-объекта, используемая для определения токсичности воды.

3.29 токсикологический эксперимент: Эксперимент в водной токсикологии, в ходе которого оценивают влияние на тест-объект тестируемой воды, донных отложений или химического вещества (например, эталонного токсиканта).

3.30 токсическое загрязнение: Загрязнение воды водоемов и водотоков токсичными веществами.

3.31 токсичность воды (донных отложений): Характеристика качества воды (донных отложений) по способности вызывать патологические изменения или гибель организмов.

3.32 «токсичные» виды водорослей: Виды синезеленых водорослей, образующие в процессе жизнедеятельности токсины.

Примечание - Наиболее распространены «токсичные» виды водорослей: Microcystis aeruginosa, Aphanizomenon flos-aquae, Anabaena flos-aquae, Oscillatoria limnetica и другие.

3.33 токсичные вещества: Вещества, способные при воздействии на живые организмы, вызывать патологические изменения или их гибель.

3.34 фоновый створ: Створ, расположенный на расстоянии не менее 1 км выше источника загрязнения [2].

3.35 хемотаксис: Двигательные реакции свободно передвигающихся организмов, а также клеток (зооспор, сперматозоидов, лейкоцитов и др.) под влиянием химических раздражителей. Хемотаксис может быть положительным - движение направлено к источнику химического раздражителя (по градиенту его концентрации в воздухе или воде), и отрицательным -движение направлено от источника.

3.36 хроническое токсическое действие; ХТД: Воздействие, при котором критерий токсичности по ответной реакции тест-объекта достигается за относительно длительный промежуток времени - от 3 до 30 сут в зависимости от биологических особенностей вида тест-объекта.

3.37

3.38 численность (плотность) водорослей: Количество клеток в единице объема питательной среды или анализируемой пробы.

Примечание - Плотность (численность) клеток выражается количеством клеток на кубический сантиметр (клеток/см³) (ГОСТ Р 54496).

3.39

3.40 экосистема: Сообщество живых организмов и среда их обитания, которые функционируют совместно (обмен веществ и энергии происходит во взаимной связи) [4].

3.41 экспозиция: Период времени, в течение которого тест-объект находится под воздействием исследуемого фактора, например, тестируемой воды или химического вещества (РД 52.24.635).

3.42 эталонный токсикант: Токсичное вещество, используемое для установления пригодности тест-объекта для биотестирования.

4 Общие положения

4.1 Биотестирование является методом оценки качества и загрязненности воды и донных отложений водотоков и водоемов по ответным реакциям водных организмов (гидробионтов), являющихся тест-объектами. Биотестирование представляет собой токсикологический эксперимент, принятый в водной токсикологии.

4.2 Методы биотестирования, будучи биологическими по сути, близки по назначению к методам химического анализа: как и химические методы, они отражают свойства проб воды или донных отложений.

Эти методы отличаются от методов биоиндикации (традиционных гидробиологических методов биологического анализа), которые позволяют получать информацию о качестве воды по наличию организмов -индикаторов загрязнения.

4.3 О наличии токсичности воды и донных отложений судят главным образом по проявлениям патологических изменений у тест-объектов под влиянием воды и донных отложений при биотестировании, вплоть до их гибели.

4.4 Показателем токсичности является тест-реакция, изменения которой регистрируют в ходе токсикологического эксперимента в течение определенного времени (экспозиции), а критерием токсичности -количественная характеристика этой тест-реакции.

4.5 Для определения токсичности донных отложений используют два подхода: биотестирование «нативных» проб донных отложений (осадков) и биотестирование водной вытяжки.

4.6 До проведения биотестирования проб воды или донных отложений определяют пригодность тест-объекта по его реакции на эталонный токсикант.

4.7 Токсикологические эксперименты проводят в условиях, оптимальных для жизнедеятельности тест-объектов с учетом их особенностей (режима температуры, освещения, питания, минерализации воды и т.д.).

4.8 В результате биотестирования устанавливают степень токсичности пробы, для оценки которой используют следующие характеристики качества воды: условно нетоксичная, слаботоксичная, токсичная, очень токсичная, экстремально токсичная или вода, оказывающая острое, подострое или хроническое токсическое действие (ОТД, пОТД или ХТД соответственно).

4.9 Результат биотестирования пробы должен быть выражен одной степенью токсичности или токсического действия.

4.10 Биотестирование проводят с использованием набора из нескольких биотестов (не менее трёх) на тест-объектах разных трофических уровней. Это связано с различной чувствительностью тест-объектов гидробионтов к загрязняющим веществам, фазностью и особенностью их реагирования на токсичность.

4.11 Заключение о токсичности пробы при использовании набора биотестов делают по данным того биотеста, в котором выявлена наибольшая степень токсичности, т.е. «по наихудшему результату».

Оценка токсичности пробы воды или донных отложений по результатам биотестирования на наборе биотестов является экспертной.

4.12 Биотестирование воды и донных отложений имеет ряд общих этапов выполнения: подготовка тест-объекта, культивирование, проверка пригодности тест-объекта по чувствительности к действию эталонного токсиканта, отбор проб воды и/или донных отложений, транспортировка проб и хранение в лаборатории, подготовка проб для биотестирования, выполнение биотестирования, обработка и оценка результата, представление результатов биотестирования по установленным формам. Общая схема и этапы работ по определению токсичности приведены в приложении А.

4.13 Особенностью биотестирования воды и донных отложений водотоков и водоемов является постановка двух контрольных серий: на дехлорированной (отстоянной в течение 5 сут) водопроводной воде и на воде, отобранной из фонового («условно чистого») створа.

Контроль на водопроводной воде обычно используют для характеристики состояния тест-объектов. Их выживаемость в этой серии должна быть не менее 90 %. Если вода фонового створа окажется токсичной, данные биотестирования проб опытной серии сравнивают с контролем на водопроводной воде.

Для нескольких проб из одного водного объекта ставят по одной контрольной серии: 1) на дехлорированной водопроводной воде и 2) на воде из фонового участка этого водного объекта.

4.14 Формирование сети пунктов и программ наблюдений проводят согласно РД 52.24.309.

5 Отбор, транспортировка и хранение проб

5.1 Отбор проб воды и их транспортировку выполняют согласно РД 52.24.309.

Посуда из полиэтилена и стекла, используемая для отбора проб и биотестирования, должна быть тщательно вымыта, ополоснута дистиллированной водой и высушена при комнатной температуре. Для мытья посуды используют гидрокарбонат натрия. Органические растворители и поверхностно-активные вещества для мытья посуды применять недопустимо. Подготовленную посуду, а также материалы помещают в полиэтиленовые пакеты, которые вскрывают непосредственно перед биотестированием. До заполнения посуды ее трижды ополаскивают водой водного объекта.

5.2 Отбор проб донных отложений для биотестирования, транспортировку, хранение проб и установление типа донных отложений проводят в соответствии с РД 52.24.609.

Помимо проб донных отложений, на этом же участке отбирают воду (по возможности из придонного слоя) для использования в биотестировании.

Характеристику пробы воды и донных отложений записывают по форме, приведенной в приложении Б.

6 Подготовка проб воды и донных отложений для биотестирования

6.1 Перед биотестированием воду фильтруют через мельничный газ или фильтровальную бумагу для удаления естественной биоты, доводят до комнатной температуры (достают из холодильника и оставляют на некоторое время до выравнивания температур).

6.2 Измеряют pH и концентрацию растворенного кислорода в воде, чтобы определить их соответствие диапазону оптимальных условий жизнедеятельности тест-объекта и не корректируют.

6.3 Рекомендуется уточнить показатели минерализации тестируемой воды, так как в некоторых водных объектах вода может иметь повышенную минерализацию, что скажется на ее токсичности вследствие несоответствия оптимальным условиям жизнедеятельности тест-объекта. В случае, если минерализация превышает 1 г/дм³, биотестирование не проводят, либо используют солоноватоводные тест-объекты согласно Р 52.24.690.

6.4 Подготовку «необработанных» проб донных отложений и их водных вытяжек для биотестрования проводят в соответствии с РД 52.24.609.

6.5 При выполнении измерений в лаборатории должны быть соблюдены следующие условия:

7 Основные методы биотестирования воды и донных отложений водотоков и водоемов

7.1 Метод биотестирования воды на водорослях

7.1.1 Принцип метода

Метод основан на установлении токсичности (ОТД и степени токсичности) тестируемой воды по угнетению роста лабораторной культуры зеленых протококковых водорослей Scenedesmus quadricauda (Тигр.) Breb. или Chlorella vulgaris Beijer.

Показателем токсичности является коэффициент прироста численности клеток водорослей при экспозиции в тестируемой пробе воды.

Критерием токсичности является снижение коэффициента прироста численности клеток водорослей в опытной серии по сравнению с контрольной от 35 % до 50 % и более за 72 или 96 ч экспозиции. При этом устанавливают наличие ОТД и степень токсичности (вода условно нетоксичная, слаботоксичная или очень токсичная).

7.1.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.1.2.1 Культура водорослей Scenedesmus quadricauda (Turp.) Breb. или Chlorella vulgaris Beijer. Основные характеристики водорослей, источники их получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в ГОСТ Р 54496.

7.1.2.2 Устройство для фильтрования с использованием мембранных или бумажных фильтров.

7.1.2.3 Шкаф сушильный общелабораторного назначения.

7.1.2.4 Холодильник бытовой.

7.1.2.5 Насос вакуумный любого типа.

7.1.2.6 Камера для счета форменных элементов крови и клеточных элементов спинно-мозговой жидкости (Горяева) по ТУ 64-1-816-84.

7.1.2.7 Люминостат с освещением рабочей зоны 3000 - 6000 лк от ламп люминесцентных по ГОСТ 6825-91.

7.1.2.8 Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.1.2.9 Пинцет медицинский по ТУ 2-31-32-73.

7.1.2.10 Стекла покровные для микропрепаратов по ГОСТ 6672-75.

7.1.2.11 Дозаторы пипеточные на 0,1 и 0,5 см³ П1 по ТУ 64-1-3329.

7.1.2.12 Пипетки с одной отметкой 2-го класса точности исполнения 2 по ГОСТ 29169-91 вместимостью 10 см³ - 3 шт.

7.1.2.13 Центрифуга лабораторная роторная любого типа

7.1.2.14 Фильтры мембранные «Владипор МФАС-ОС-2», 0,45 мкм, по ТУ 6-55-221-1-29-89 или другого типа, равноценные по характеристикам.

7.1.2.15 Колбы конические типа Кн исполнения 2 по ГОСТ 25336-82 вместимостью 250 см³ - 20 шт.

7.1.2.16 Цилиндры мерные исполнения 1, 3 по ГОСТ 1770-74 вместимостью 100 см³ - 2 шт.

7.1.2.17 Стаканы типа В, исполнения 1, ТХС по ГОСТ 25336-82 вместимостью: 50 см³ - 2 шт., 1000 см³ - 1 шт.

7.1.2.18 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

7.1.2.19 Марля медицинская по ГОСТ 9412-93.

7.1.2.20 Вода дистиллированная по ГОСТ 6709-72.

7.1.2.21 Вода водопроводная дехлорированная.

7.1.2.22 Спирт этиловый для обезжиривания покровных стекол по ГОСТ Р 5962-2013

Примечание - Допускается использование других типов средств измерений, вспомогательных устройств, в том числе импортных, с характеристиками не хуже, чем у приведенных в 7.1.2; спирта этилового, изготовленного по другой нормативно-технической документации, с квалификацией не ниже указанной в 7.1.2.22.

7.1.3 Подготовка культуры водорослей

7.1.3.1 В коническую колбу вместимостью 250 см³ помещают питательную среду для культивирования, полученную в соответствии с приложением В, и 10 см³ культуры водорослей Scenedesmus quadricauda (Turp.) Breb. или Chlorella vulgaris Beijer, закрывают ватно-марлевой пробкой, стерилизованной в сушильном шкафу в течение 1 ч при 100 °С, и помещают в люминостат. Культура пригодна для получения суспензии на стадии экспоненциального роста. Длительность периода экспоненциального роста от 5 до 7 сут.

7.1.3.2 Подготовка мембранных фильтров

Мембранные фильтры подготавливают следующим образом. На глянцевой (рабочей) поверхности фильтра ставят метку простым карандашом. Фильтры помещают в термостойкий стакан вместимостью 1000 см³, приливают 300 - 400 см³ дистиллированной воды и кипятят в течение 20 мин. Эту процедуру повторяют трижды, сливая воду после каждого кипячения. Фильтры хранят во влажном состоянии. После длительного хранения (10 дней и более) фильтры перед использованием вновь кипятят в дистиллированной воде в течение 10 мин.

7.1.3.3 Получение суспензии для биотестирования

Перед биотестированием культуру водорослей по 7.1.3.1 сгущают, фильтруя через мембранный фильтр с помощью устройства для фильтрования. Водоросли на фильтре пересушивать недопустимо.

Сконцентрированную на фильтре культуру водорослей с помощью пипетки вместимостью 10 см³ смывают в стакан питательной средой для культивирования, приготовленной в соответствии с приложением В.

Для этого фильтр снимают с воронки пинцетом и помещают в чистый стакан вместимостью 50 см³, прислонив к стенкам стакана так, чтобы фильтр не доставал 2 - 3 см до дна стакана. По каплям выпускают воду из пипетки на фильтр, смывая клетки водорослей в стакан мягкой кисточкой.

Клетки водорослей можно также сконцентрировать путем центрифугирования в течение 10 мин при 4000 - 4500 об/мин.

Численность клеток в полученной суспензии должна быть в пределах от 5×10⁶ до 10×10⁶ клеток/см³.

Перед выполнением биотестирования проводят проверку пригодности культуры водорослей в соответствии с Г.2.3 (приложение Г).

7.1.4 Выполнение биотестирования

7.1.4.1 Для биотестирования ставят опытные и контрольную серии. Желательно использовать две контрольные серии: на дехлорированной водопроводной воде и, по возможности, на воде, отобранной на фоновом створе водного объекта и отфильтрованной через бумажный фильтр «белая лента». Для всех опытных серий ставят по одной контрольной серии на дехлорированной водопроводной воде и на воде, отобранной на фоновом створе по 4.13.

Каждую серию ставят в трех повторностях. Опытные и контрольные серии ставят одновременно.

7.1.4.2 Для приготовления опытной серии помещают в каждую из трех конических колб вместимостью 250 см³ по 100 см³ тестируемой воды и по 0,1 см³ питательной среды для биотестирования, приготовленную согласно приложению В, и суспензию водорослей. Объем суспензии рассчитывают таким образом, чтобы численность клеток в каждой из трех колб находилась в пределах от 25×10³ до 50×10³ клеток/см³.

Для проведения биотестирования колбы перемешивают встряхиванием, закрывают ватно-марлевыми пробками, стерилизованными в сушильном шкафу в течение 1 ч при 100 °С. Определяют исходную численность клеток водорослей согласно 7.1.5. Подсчет повторяют трижды в каждой колбе и рассчитывают среднее арифметическое исходной численности клеток водорослей. Содержимое колб вновь перемешивают, закрывают стерильными ватно-марлевыми пробками и помещают в люминостат на экспозицию 72 ч при постоянном освещении 3000 - 6000 лк. Ежедневно 1 - 2 раза в день колбы перемешивают встряхиванием.

7.1.4.3 Для приготовления контрольной серии помещают в каждую из трех конических колб вместимостью 250 см³ по 100 см³ дехлорированной водопроводной воды (или отфильтрованной воды, отобранной на фоновом створе водного объекта) и по 0,1 см³ питательной среды для биотестирования, приготовленную согласно приложению В, и суспензию водорослей в каждую. Объем суспензии рассчитывают таким образом, чтобы численность клеток в каждой из трех колб находилась в пределах от 25×10³ до 50×10³ клеток/см³.

Биотестирование контрольной серии проводят аналогично 7.1.4.2.

7.1.4.4 Через 72 ч проводят подсчет численности клеток водорослей в контрольной и опытных сериях. Если через 72 ч в опытной серии токсичность выявляется (7.1.5), эксперимент прекращают, считая его законченным. В противном случае эксперимент продолжают до 96 ч.

7.1.5 Регистрация численности клеток водорослей

Численность клеток водорослей определяют путем подсчета под микроскопом в камере Горяева.

Примечание - Изменения численности клеток водорослей можно определить также путем измерения оптической плотности культуры водорослей согласно ГОСТ Р 54496.

При использовании камеры Горяева увеличение объектива микроскопа должно быть 20×, а окуляра от 10× до 15×. Все элементы камеры Горяева обезжиривают спиртом, накрывают камеру покровным стеклом и притирают его до образования радужных колец интерференции. Из каждой колбы стеклянной палочкой вносят по одной капле тщательно перемешанной суспензии на верхний и нижний края покровного стекла. Камеру заполняют так, чтобы не образовывались пузырьки воздуха, избыток суспензии вытесняется по канавкам. Просматривают 16 малых квадратов по диагонали или все поле камеры. Если по результату подсчета численность в 16 квадратах более 50 клеток, то учитывают полученное значение и все поле камеры не обсчитывают.

Вычисляют численность клеток водорослей в 1 см³ суспензии по формуле

где М - численность клеток водорослей, клеток/см³;

m - число подсчитанных клеток в малых квадратах камеры, клеток;

n - число просчитанных малых квадратов камеры;

V - объем части камеры, соответствующий площади малого квадрата, см³.

7.1.6 Обработка результатов, расчеты и оценка токсичности воды

Для оценки токсичности тестируемой воды рассчитывают коэффициенты прироста численности клеток водорослей B_t, отн. ед, за 72 или 96 ч экспозиции в опытной и контрольной сериях, используя формулу

где  - среднее арифметическое значение численности клеток водорослей в опытной и в контрольной сериях через 72 или 96 ч экспозиции, клеток/см³;

 - среднее арифметическое значение исходной численности клеток водорослей в опытной и в контрольной сериях, клеток/см³.

Рассчитывают отклонение коэффициента прироста численности клеток водорослей Δ_t, % по формуле

где  - коэффициент прироста численности клеток водорослей в контрольной серии, отн. ед.;

 - коэффициент прироста численности клеток водорослей в опытной серии, отн. ед.;

t - экспозиция, ч.

Снижение коэффициента прироста численности клеток водорослей в опытной серии по сравнению с контрольной свидетельствуют об угнетении роста водорослей и указывает на токсичность пробы воды. Оценку токсичности воды: токсического действия и степени токсичности, - проводят по значениям отклонения коэффициента прироста численности клеток водорослей, используя таблицу 1.

Таблица 1 - Оценка токсичности воды по отклонению коэффициента прироста численности клеток водорослей (угнетению роста водорослей)

Наиболее надежной является оценка по ОТД, о наличии которого судят по снижению коэффициента прироста численности водорослей на 50 % и более за 72 или 96 ч экспозиции.

В отдельных случаях коэффициенты прироста численности клеток водорослей в опытной серии могут быть больше, чем в контрольной (Δ_t будет иметь отрицательное значение). В этих случаях тестируемая вода оказывает стимулирующее влияние на рост водорослей, которое отмечают в журнале.

Полученные результаты записывают по форме таблицы Д.1 (приложение Д).

7.2 Метод биотестирования воды на дафниях

7.2.1 Принцип метода

Метод основан на установлении токсического действия: ОТД, пОТД или ХТД - тестируемой воды на лабораторную культуру дафний Daphnia magna St. Токсическое действие тестируемой воды устанавливают по снижению выживаемости или плодовитости дафний в опытной серии по сравнению с контрольной при определенной экспозиции.

Показателями токсичности служат выживаемость и плодовитость дафний. Выживаемость выражают как среднее число выживших дафний, плодовитость - как среднее число выметанной молоди в расчете на одну выжившую (на момент регистрации) особь, в течение экспозиции в тестируемой воде.

Критерием токсичности является снижение выживаемости дафний на 50 % по сравнению с контрольной серией для ОТД при экспозиции 96 ч (4 сут), для пОТД - при экспозиции св. 4 до 7 сут. Выживаемость дафний в контрольной серии не должна быть ниже 90 %. Критерием ХТД является статистически достоверное снижение плодовитости дафний по сравнению с плодовитостью в контрольной серии при экспозиции св. 7 до 30 сут. Статистическую обработку проводят в соответствии с приложением Е.

7.2.2 Необходимые материалы, оборудование

7.2.2.1 Культура дафний Daphnia magna St. Основные характеристики дафний, источники их получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в ГОСТ Р 56236.

7.2.2.2 Одноклеточные протококковые водоросли для кормления дафний родов Chlorella и Scenedesmus. Культивирование водорослей производится на питательной среде в соответствии с приложением В.

7.2.2.3 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

7.2.2.4 Цилиндры мерные исполнения 1, 3 по ГОСТ 1770-74 вместимостью 250 см³ - 2 шт.

7.2.2.5 Стаканы типа В исполнения 2 по ГОСТ 25336-82 вместимостью 600 см³ - 1 шт.

7.2.2.6 Устройство для фильтрования с использованием мембранных или бумажных фильтров.

7.2.2.7 Аквариумы вместимостью 10 - 30 дм³.

7.2.2.8 Стеклянная палочка диаметром 4 мм и длиной 1500 мм по ГОСТ 27460-87 - 1 шт.

7.2.2.9 Ткани для сит из шелковых и синтетических нитей (мельничный газ № 76) по ГОСТ 4403-91.

7.2.3 Подготовка к биотестированию

Для биотестирования рекомендуется использовать молодь дафний: односуточных особей из синхронизированной культуры (например, третье поколение, полученное путем ациклического партеногенеза в определенных условиях разведения (в соответствии с ИСО 6341:2012) или одновозрастных дафний из несинхронизированной культуры.

Перед выполнением биотестирования:

1) пробы воды фильтруют через мельничный газ или бумажный фильтр для удаления природного зоопланктона;

2) проводят проверку пригодности культуры дафний в соответствии Г.2.4 (приложение Г.)

7.2.4 Выполнение биотестирования

Непосредственно перед выполнением биотестирования молодь дафний отлавливают стеклянной палочкой из аквариума, где содержится культура, и помещают в стеклянный стакан вместимостью 600 дм³ для удобства их последующего переноса в стаканы для биотестирования.

Каждую серию ставят в трех повторностях.

Для приготовления опытной серии в три стакана вместимостью 600 см³ помещают по 10 особей дафний в каждый, удаляют излишек аквариумной воды пипеткой и сразу осторожно (по стенке, чтобы не травмировать дафний!) приливают мерным цилиндром по 250 см³ тестируемой воды.

Для приготовления контрольной серии в 3 стакана вместимостью 600 см³ помещают вначале по 10 особей дафний в каждый, удаляют излишек аквариумной воды пипеткой и сразу осторожно (по стенке, чтобы не травмировать дафний!) приливают мерным цилиндром по 250 см³ аквариумной воды.

Таким образом, необходимый общий объем одной пробы воды для биотестирования составляет 600 см³, а общее количество дафний на одну пробу - 30 особей.

В течение первых двух суток дафний не кормят, с третьих - начинают кормить, приливая 1 - 2 капли взвеси водорослей ежедневно. Количество корма, вносимое в сосуды для биотестирования, должно быть одинаковым.

7.2.5 Регистрация показателей выживаемости и плодовитости дафний

Наблюдения за дафниями ведут в первый час непрерывно, затем в течение 6 ч - каждый час, в дальнейшем 2 раза в день ежедневно.

Регистрируют показатели выживаемости и плодовитости. Кроме того, учитывают поведение рачков, изменение окраски тела и другие показатели жизнедеятельности. Погибшими считают дафний, которые лежат на дне стакана и не совершают плавательных движений после его покачивания в течение 15 с (даже если их антенны колеблются). Погибших дафний учитывают и удаляют из стакана. По мере появления молоди ее изымают из стаканов, просчитывают и удаляют.

Опыт прекращают и эксперимент считают завершенным, если вода проявит токсичность по показателю выживаемости, которую оценивают как ОТД или пОТД или продолжают до тех пор, пока не будет установлено ХТД по показателю плодовитости (в соответствии с 7.2.6).

При обнаружении ОТД или пОТД биотестирование прекращают.

Данные о количестве выживших дафний и выметанной молоди за каждые сутки наблюдений записывают по формам таблиц Д.2 и Д.3 (приложение Д).

7.2.6 Обработка результатов, расчеты и оценка токсичности воды

Показатель выживаемости дафний в опытной серии , %, рассчитывают по формуле

где  - количество выживших дафний в каждой повторности при экспозиции i, экз.;

N_o - исходное количество дафний в каждой повторности, экз.

Выживаемость дафний в контрольной серии , %, рассчитывают по формуле

где  - количество выживших дафний в каждой повторности при экспозиции i, экз.;

N_к - исходное количество дафний в каждой повторности, экз.

Показатель плодовитости дафний в опытной серии , %, по сравнению с контрольной рассчитывают по формуле

Плодовитость дафний D, %, в тестируемой воде и в контроле рассчитывают по формуле

где M_j - численность молоди в каждом вымете при экспозиции j, экз.;

N_j - количество дафний, выметавших молодь и выживших к моменту учета данных по плодовитости, экз.

Результаты биотестирования по снижению выживаемости и плодовитости используют для оценки токсичности тестируемой воды.

Острое, подострое и хроническое токсическое действие (ОТД, пОТД и ХТД соответственно) тестируемой воды на дафний устанавливают в соответствии с критерием токсичности согласно 7.2.1.

Если плодовитость в опытной серии увеличена по сравнению с контрольной, считают, что проба тестируемой воды не токсична, а оказывает стимулирующее действие на дафний.

Полученные данные биотестирования записывают в соответствии с формами таблицы Д.2 и таблицы Д.3 (приложение Д).

Статистическую обработку результатов биотестирования по установлению ХТД проводят согласно приложению Е.

Результаты биотестирования проб, отобранных на различных участках водного объекта, используют для оценки уровня токсического загрязнения водного объекта согласно разделу 11.

7.3 Метод биотестирования воды и донных отложений на инфузориях

7.3.1 Принцип метода

Метод основан на установлении токсического действия тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений по влиянию на лабораторную культуру инфузорий Paramecium caudatum Ehrenberg 1838, п/т Ciliata. Влияние оценивают по изменению показателей гибели и плодовитости инфузорий при определенной экспозиции в опытной серии по сравнению с контрольной.

Токсичность оценивают по показателю гибели (среднее количество погибших инфузорий) или показателю плодовитости (средний прирост численности инфузорий, появившихся от одной особи) в течение экспозиции.

Критерием токсичности служит увеличение показателя гибели на 25 % и более, снижение плодовитости на 50 % и более в опытной серии по сравнению с контрольной в зависимости от экспозиции.

Острое, подострое и хроническое токсическое действие тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений на инфузорий устанавливают в зависимости от времени, по истечении которого показатели гибели и плодовитости достигают критерия токсичности: ОТД устанавливают при экспозиции от 1 до 24 ч, пОТД - 48 ч, ХТД - 72 ч.

7.3.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.3.2.1 Культура инфузорий Paramecium caudatum Ehrenberg 1838, п/т Ciliata. Основные характеристики Paramecium caudatum, источники получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в Р 52.24.741.

7.3.2.2 Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.3.2.3 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

7.3.2.4 Дрожжи хлебопекарные прессованные по ГОСТ Р 54731-2011.

7.3.2.5 Пипетки Пастера по ТУ 9464-001-52876351-2000 - 3 шт.

7.3.2.6 Пипетки второго класса точности на 1 см³ ГОСТ 29228-91 - 3 шт.

7.3.2.7 Планшеты иммуноферментные с крышками на 96 лунок, плоскодонные по ТУ 9398-058-00480230-2009 - 2 шт.

7.3.2.8 Чашки биологические ЧБН (Петри) по ГОСТ 25336-82 диаметром 100 мм - 4 шт.

7.3.2.9 Стаканы типа В, исполнения 1 по ГОСТ 25336-82 вместимостью 100 см³ - 2 шт.

7.3.2.10 Вода водопроводная дехлорированная (отстоянная в течение 5 сут).

7.3.2.11 Стеклянная палочка диаметром 4 мм и длиной 1500 мм по ГОСТ 27460-87 - 1 шт.

Примечание - Допускается применение других типов средств измерений, вспомогательных устройств, в том числе импортных, с аналогичными и лучшими метрологическими и техническими характеристиками.

7.3.3 Подготовка к биотестированию

Исходный материал инфузорий для биотестирования получают за 1 - 3 сут до опыта.

Для этого в чистую чашку Петри приливают 60 см³ дехлорированной водопроводной воды и помещают 1 - 2 кусочка размером 1 мм³ высушенных хлебопекарных прессованных дрожжей. Содержимое чашки Петри тщательно размешивают стеклянной палочкой и вносят 1 каплю культуральной среды инфузорий по 7.3.2.1.

Перед выполнением биотестирования проводят проверку пригодности культуры инфузорий для использования в биотесте по чувствительности к эталонному токсиканту в соответствии с Г.2.5 (приложение Г).

Пробу тестируемой воды фильтруют через бумажный фильтр «белая лента» для удаления взвеси.

Водную вытяжку из донных отложений готовят согласно Р 52.24.662.

7.3.4 Выполнение биотестирования

7.3.4.1 Общий объем воды и водной вытяжки донных отложений для биотестирования одной пробы составляет 20 см³.

Биотестирование проводят на индивидуальных линиях инфузорий при комнатной температуре в нестерильных условиях в защищенном от прямого солнечного света месте. Для этого используют иммуноферментный планшет. В каждой серии биотестирования (опытной и контрольной) используют по 40 особей (четыре повторности из 10 лунок).

7.3.4.2 Для проведения биотестирования в каждую из 40 лунок иммуноферментного планшета с помощью пипетки Пастера под микроскопом отсаживают по одной особи инфузорий.

7.3.4.3 Попавшую с инфузориями воду удаляют с помощью фильтровальной бумаги «белая лента» и пипеткой вместимостью 1 см³ приливают 0,5 см³ тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений.

7.3.4.4 Одновременно ставят две контрольные серии. Для этого в каждую из 80 лунок второго иммуноферментного планшета с помощью пипетки Пастера под микроскопом отсаживают по одной особи инфузорий. В 40 лунок добавляют по 0,5 см³ дехлорированной (отстоянной в течение 5-ти сут) водопроводной воды, в остальные 40 лунок - воды, отобранной из фонового («условно чистого») створа.

7.3.4.5 Через 24 ч от начала биотестирования инфузорий кормят суспензией дрожжей хлебопекарных прессованных. Суспензию готовят посредством внесения 1 - 2 кусочков высушенных дрожжей хлебопекарных прессованных размером 1 мм³ в стакан с 50 см³ дехлорированной водопроводной воды. Далее содержимое стакана перемешивают стеклянной палочкой и выдерживают в течение 1 ч. Полученную суспензию объемом 0,05 см³ вносят в каждую лунку пипеткой вместимостью 1 см³.

7.3.5 Регистрация показателей гибели и плодовитости

Регистрацию показателей гибели и плодовитости проводят путем учета количества и состояния инфузорий в каждой лунке. Учет количества инфузорий ведут под микроскопом при увеличении 4×12 через 24, 48 и 72 ч.

Во время наблюдений под микроскопом содержимое лунок осторожно барботируют пузырьками воздуха из пипетки Пастера для того, чтобы выявить неподвижных погибших особей.

Показателем гибели инфузорий служит деформация тела, разрыв оболочки (пелликулы), лизис клетки, а также сохранение неподвижности после барботирования водной среды.

Исходную численность инфузорий, число живых и погибших особей в контрольных и опытной сериях в течение биотестирования записывают в соответствии с таблицей Д.4 (приложение Д).

7.3.6 Обработка результатов и оценка токсичности воды

7.3.6.1 Результаты биотестирования оценивают по показателям гибели и плодовитости инфузорий за 24, 48 и 72 ч.

При обработке результатов биотестирования вначале сравнивают показатели гибели в контрольных сериях на дехлорированной водопроводной воде и на воде из фонового створа при условии, что гибель в дехлорированной водопроводной воде не выше 10 %. Если увеличение показателя гибели инфузорий в воде фонового створа по сравнению с дехлорированной водопроводной водой не превышает 25 % (вода фонового створа не токсична), то результаты в опытной серии сравнивают с контролем на воде из фонового створа. Если в воде фонового створа увеличение показателя гибели инфузорий по сравнению с контрольной серией на дехлорированной водопроводной воде составляет 25 % и более, то воду фонового створа оценивают как токсичную и результаты опытной серии сравнивают с контрольной серией на водопроводной воде.

7.3.6.2 Относительное количество особей погибших инфузорий в опытной или контрольной сериях N_ги,%, рассчитывают по формуле

где  - среднее арифметическое значение количества особей погибших инфузорий в опытной или контрольной сериях, экз.;

 - среднее арифметическое значение исходного количества особей инфузорий в опытной или контрольной сериях, экз.

7.3.6.3 Изменение показателя гибели инфузорий А_ги, %, в опытной серии по сравнению с контрольной, выбранной согласно 7.3.6.1, рассчитывают по формуле

где  - относительное количество особей погибших инфузорий в опытной серии,%;

 - относительное количество особей погибших инфузорий в контрольной серии,%.

Увеличение гибели инфузорий в опытной серии по сравнению с контрольной на 25 % и более свидетельствует о наличии токсического действия тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений.

7.3.6.4 Если увеличение показателя гибели в опытной серии менее 25 %, то далее рассчитывают среднее значение показателя плодовитости инфузорий  (количество особей, полученных от одной инфузории) на основе прироста их численности для каждой экспозиции (24, 48, 72 ч) в опытной и контрольной сериях по формуле

где  - общее количество инфузорий для соответствующей экспозиции t, экз.;

 - общее исходное количество инфузорий, экз.

Отклонение значений показателя средней плодовитости инфузорий опытной серии от контрольной А_GИ, %, рассчитывают по формуле

где  и  - значения показателей средней плодовитости инфузорий в опытной и контрольной сериях соответственно.

Отклонения значения показателя плодовитости в опытной серии от контрольной могут быть отрицательными и положительными. Положительные значения отклонения свидетельствуют об увеличении плодовитости по сравнению с выбранной контрольной серией. Это может быть обусловлено наличием достаточного количества в тестируемой воде (или водной вытяжке) бактерий и органических веществ. В этом случае действие оценивают как стимулирующее.

Токсическое действие тестируемой воды или водных вытяжек донных отложений по показателям гибели и плодовитости инфузорий в зависимости от времени выявления (экспозиции) проводят в соответствии с таблицей 3.

Результаты биотестирования записывают по форме таблицы Д.5 (приложение Д).

Таблица 3 - Оценка токсического действия воды или водных вытяжек донных отложений по данным биотестирования на инфузориях

7.4 Экспресс-метод биотестирования воды по реакции хемотаксиса инфузорий

7.4.1 Принцип метода

Экспресс-метод основан на установлении токсичности тестируемой воды по влиянию на хемотаксис инфузорий Paramecium caudatum Ehrenberg 1838, п/m Ciliata. Далее - парамеций.

Влияние тестируемой воды оценивают по двигательной реакции инфузорий. Показателем токсичности служит положительный хемотаксис: количество инфузорий, переместившихся в тестируемую воду в течение 2 ч экспозиции. Количество особей, перемещающихся в тестируемую воду, зависит от ее токсичности. При отсутствии токсичности в тестируемой воде парамеции распределяются относительно равномерно между исходной и тестируемой водой. С увеличением токсичности число переместившихся в тестируемую воду парамеций уменьшается, т.е. положительный хемотаксис снижается.

Критерием токсичности является снижение количества переместившихся в тестируемую воду парамеций (положительного хемотаксиса) до 25 % и менее от их исходного числа.

7.4.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.4.2.1 Культура инфузорий Paramecium caudatum Ehreberg 1838, п/т Ciliata. Основные характеристики Paramecium caudatum, источники получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в Р 52.24.741.

7.4.2.2 Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.4.2.3 Пипетки Пастера по ТУ 9464-001-52876351-2000 - 3 шт.

7.4.2.4 Пипетки концевые 2-го класса точности по ГОСТ 29228-91 вместимостью 1 см³ - 3 шт.

7.4.2.5 Чашки биологические ЧБН (Петри) по ГОСТ 25336-82 диаметром 100 мм - 3 шт.

7.4.2.6 Стеклянная палочка диаметром 4 мм и длиной 1500 мм по ГОСТ 27460-87 - 1 шт.

7.4.2.7 Дрожжи хлебопекарные прессованные по ГОСТ Р 54731-2011.

7.4.2.8 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

Примечание - Допускается применение других типов средств измерений, вспомогательных устройств, в том числе импортных, с аналогичными и лучшими метрологическими и техническими характеристиками.

7.4.3 Подготовка к биотестированию

Исходный материал парамеций получают за 1 - 3 сут до биотестирования. Для этого в чистую чашку Петри приливают 60 см³ дехлорированной водопроводной воды и помещают 1 - 2 кусочка размером 1 мм³ высушенных хлебопекарных прессованных дрожжей. Содержимое чашки Петри тщательно размешивают стеклянной палочкой и вносят 1 каплю культуральной среды парамеций по 7.4.2.1.

Перед выполнением биотестирования проводят проверку пригодности культуры парамеций для использования в биотесте по чувствительности к эталонному токсиканту в соответствии с Г.2.5 (приложение Г).

Биотестирование проводят при комнатной температуре в нестерильных условиях, в защищенном от прямого солнечного света месте.

Пробу тестируемой воды фильтруют через бумажный фильтр «белая лента» для удаления взвеси.

7.4.4 Выполнение биотестирования

7.4.4.1 Общий объем воды для биотестирования одной пробы составляет 50 см³.

7.4.4.2 Биотестирование проводят на культуральной среде парамеций, полученной по 7.4.3. Для этого в чашку Петри пипеткой вместимостью 1 см³ вносят одну каплю (0,1 см³) культуральной среды с парамециями. Под микроскопом подсчитывают исходное количество парамеций.

7.4.4.3 Далее в эту же чашку Петри на расстоянии 0,5 - 0,8 см с первой каплей вносят одну каплю (0,1 см³) тестируемой воды. С помощью пипетки Пастера делают перемычку между каплей с тестируемой водой и каплей с культуральной средой и наблюдают за перемещением парамеций в тестируемую воду.

7.4.4.4 Биотестирование каждой пробы воды проводят в трех повторностях. Для тестирования одной пробы воды необходимы 3 чашки Петри. Парамеций в чашки Петри вносят с интервалом в 10 мин для удобства последующей регистрации.

7.4.5 Регистрация реакции хемотаксиса

Регистрацию реакции хемотаксиса проводят путём учета в каждой из 3 чашек Петри количества особей парамеций, переместившихся в тестируемую воду.

Учет парамеций ведут под микроскопом через 30 и 120 мин.

7.4.6 Обработка результатов и оценка токсичности воды

Результаты биотестирования оценивают по положительному хемотаксису, т.е. количеству парамеций, переместившихся в тестируемую воду.

Рассчитывают средний процент парамеций, переместившихся в тестируемую воду на основании результатов трех параллельных определений. Если количество переместившихся в тестируемую воду парамеций составит не более 25 %, то воду оценивают как токсичную.

Полученные результаты биотестирования записывают по форме таблицы Д.6 (приложение Д).

7.5 Метод биотестирования воды и донных отложений на коловратках

7.5.1 Принцип метода

Метод основан на установлении токсического действия тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений по влиянию на лабораторную культуру коловраток Brachionus calyciflorus Pallas (кл. Rotatoria/Rotifera). Влияние тестируемой воды оценивают по изменению показателей гибели (число погибших особей) и плодовитости коловраток (количество молоди, полученное от одной самки) в зависимости от экспозиции в опытной серии по сравнению с контрольной.

Критерием токсичности является увеличение показателей гибели на 30 % и более, снижение показателей плодовитости на 50 % и более в опытной серии по сравнению с контрольной в зависимости от экспозиции.

ОТД, пОТД и ХТД тестируемой пробы на коловраток устанавливают в зависимости от времени, по истечении которого показатели гибели и плодовитости достигают критерия токсичности: ОТД устанавливают при экспозиции от 1 до 24 ч, пОТД - 48 ч, ХТД - 96 ч.

7.5.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.5.2.1 Культура коловраток Brachionus calyciflorus Pallas. Основные характеристики коловраток, источники их получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в Р 52.24.662.

7.5.2.2 Одноклеточные протококковые водоросли родов Chlorella и Scenedesmus для кормления дафний. Культуру водорослей готовят на питательной среде в соответствии с приложением В.

7.5.2.3 Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.5.2.4 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

7.5.2.5 Стаканы типа В, исполнения 1 по ГОСТ 25336-82 вместимостью 100 см³ - 2 шт.

7.5.2.6 Пипетки Пастера по ТУ 9464-001-52876351-2000 - 3 шт.

7.5.2.7 Пипетки второго класса точности по ГОСТ 29228-91 вместимостью 1 см³ - 3 шт., на 10 см³ - 1 шт. - 3 шт.

7.5.2.8 Планшеты иммуноферментные с крышками на 96 лунок, плоскодонные по ТУ 9398-058-00480230-2009 - 2 шт.

7.5.2.10 Вода водопроводная дехлорированная (отстоянная в течение 5 сут).

Примечание - Допускается применение других типов средств измерений, вспомогательных устройств, в том числе импортных, с аналогичными и лучшими метрологическими и техническими характеристиками.

7.5.3 Подготовка к биотестированию

Для биотестирования используют культуру коловраток в начале стационарной фазы роста. Получают такую культуру за 5 - 7 сут до проведения биотестирования. Для этого 20 - 30 особей коловраток с помощью пипетки Пастера отсаживают в стаканы вместимостью 100 см³, наполненные 60 см³ дехлорированной водопроводной воды. Затем в стакан пипеткой вместимостью 10 см³ вносят 10 см³ суспензии микроводорослей родов Chlorella, Scenedesmus. Стакан с коловратками и водорослями помещают в оптимальные условия при температуре (22 ± 4) °С, без принудительного освещения и продолжают культивирование в течение 5 - 7 сут. Развитие коловраток в замкнутом объеме происходит по общим для микроорганизмов закономерностям и проходит такие же стадии роста: лаг-фазу, фазу логарифмического роста, стационарную фазу и фазу отмирания. Фазу роста популяции коловраток определяют при ежедневном подсчете их количества в единице объема. Отсутствие прироста количества коловраток в популяции свидетельствует о наступлении стационарной фазы роста.

Перед выполнением биотестирования проводят проверку пригодности культуры коловраток для использования в биотесте по их чувствительности к эталонному токсиканту в соответствии с Г.2.5 (приложение Г).

Воду, предназначенную для тестирования, фильтруют через бумажный фильтр «белая лента» для удаления взвеси.

Водную вытяжку из донных отложений готовят согласно Р 52.24.662.

7.5.4 Выполнение биотестирования

7.5.4.1 Общий объем воды и водной вытяжки донных отложений для биотестирования одной пробы составляет 20 см³.

Биотестирование проводят методом индивидуальных линий при комнатной температуре в нестерильных условиях в защищённом от прямого солнечного света месте. Для этого используют иммуноферментные планшеты. В каждой серии биотестирования (опытной и контрольной) используют по 40 особей коловраток (4 повторности из 10 лунок).

7.5.4.2 Для проведения биотестирования в каждую из 40 лунок иммуноферментного планшета с помощью пипетки Пастера под микроскопом отсаживают по одной особи коловраток.

7.5.4.3 Попавшую с коловратками воду удаляют с помощью фильтровальной бумаги «белая лента» и приливают по 0,5 см³ тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений.

7.5.4.4 Одновременно ставят две контрольные серии. Для этого в каждую из 80 лунок второго иммуноферментного планшета с помощью пипетки Пастера под микроскопом отсаживают по одной особи коловраток. В 40 лунок пипеткой вместимостью 1 см³ добавляют по 0,5 см³ дехлорированной (отстоянной в течение пяти сут) водопроводной воды, в остальные 40 - по 0,5 см³ воды, отобранной из фонового («условно чистого») створа.

7.5.4.5 Через 24 ч от начала биотестирования коловраток кормят суспензией протококковых водорослей родов Chlorella, Scenedesmus, добавляя по 0,05 см³ суспензии плотностью не ниже 250 тыс. клеток/см³.

7.5.5 Регистрация показателей гибели и плодовитости коловраток

Регистрацию показателей гибели и плодовитости проводят путём учета количества и состояния коловраток в каждой лунке.

Учет погибших особей и родившейся молоди коловраток проводят в каждой лунке с помощью микроскопа при увеличении 2×14 в течение 4 сут. Наблюдения за гибелью в первые сутки проводят через 1, 3, 5, 24 ч, а затем строго через 48 и 96 ч. Погибшими считают коловраток, сохранивших неподвижность после барботирования среды пузырьками воздуха пипеткой Пастера.

Наблюдения за размножением коловраток для расчета плодовитости проводят через 24, 48 и 96 ч. При наблюдении за размножением учитывают общее количество родившейся жизнеспособной молоди за экспозицию и количество молоди в расчете на одну самку. Патология размножения проявляется в виде абортирования яиц, уродливой, мертворожденной и нежизнеспособной молоди.

Родившуюся молодь и погибших особей из лунок удаляют.

7.5.6 Обработка результатов и оценка токсичности

7.5.6.1 Результаты биотестирования оценивают по показателям гибели и плодовитости за 24, 48 и 96 ч.

При обработке результатов биотестирования вначале сравнивают показатели гибели в контрольных сериях на дехлорированной водопроводной воде и на воде из фонового створа при условии, что гибель в дехлорированной водопроводной воде не превышает 10 %. Если в воде фонового створа увеличение показателя гибели по сравнению с дехлорированной водопроводной водой не превышает 25 % (вода фонового стовора не токсична), то результаты в опытной серии сравнивают с контрольной на воде из фонового створа. Если в воде фонового створа увеличение показателя гибели коловраток по сравнению с контрольной серией на дехлорированной водопроводной воде составляет 25 % и более, то воду фонового створа оценивают как токсичную и результаты опытной серии сравнивают с контрольной серией на дехлорированной водопроводной воде.

7.5.6.2 Относительное количество особей погибших коловраток в опытной или контрольной сериях , %, рассчитывают по формуле

где  - среднее арифметическое значение количества особей погибших коловраток в опытной или контрольной сериях при экспозиции t, экз.;

 - среднее арифметическое значение исходного количества особей коловраток в опытной или контрольной сериях, экз.

7.5.6.3 Изменение показателя гибели коловраток А_гк, %, в опытной серии по сравнению с контрольной, выбранной согласно 7.5.6.1, рассчитывают по формуле

где  - относительное количество особей погибших коловраток в опытной серии, экз.;

 - относительное количество особей погибших коловраток в контрольной серии, экз.

Увеличение показателя гибели коловраток в опытной серии по сравнению с контрольной на 25 % и более свидетельствует о наличии токсического действия тестируемой воды.

7.5.6.4 Если показатель гибели коловраток в опытной серии менее 25 %, то оценку токсичности тестируемой пробы проводят далее с использованием показателя плодовитости.

Среднее значение показателя плодовитости коловраток (количество молоди, полученное от одной самки)  рассчитывают по формуле

где  - среднее арифметическое значение количества особей коловраток на момент времени t, экз.;

 - среднее арифметическое значение исходного количества особей коловраток, экз.

Отклонение среднего значения показателя плодовитости коловраток в опытной серии от контрольной , %.

где  и  - среднее значение показателя плодовитости коловраток в опытной и контрольной сериях соответственно, экз.

Отклонения значений показателя плодовитости в опытной серии от контрольной могут быть отрицательными и положительными. Положительные отклонения свидетельствуют об увеличении плодовитости по сравнению с выбранной контрольной серией. Это может быть обусловлено наличием достаточного количества бактерий и органических веществ в тестируемой воде. В этом случае действие воды оценивают как стимулирующее.

Токсическое действие (ОТД, пОТД, ХТД) определяют по показателям гибели и плодовитости коловраток в зависимости от времени выявления, т.е. от экспозиции, в соответствии с таблицей 4. В случае увеличения показателя плодовитости в сравнении с контролем отмечают стимулирующее действие тестируемой воды.

Таблица 4 - Оценка токсического действия воды или водных вытяжек донных отложений поданным биотестирования на коловратках

Результаты биотестирования записывают по форме таблицы Д.7 (приложение Д).

7.6 Экспресс-метод биотестирования воды и водной вытяжки донных отложений по пищевой активности коловраток

7.6.1 Принцип метода

Экспресс-метод основан на установлении острого токсического действия (ОТД) тестируемой воды или водных вытяжек донных отложений по влиянию на функцию питания протококковыми водорослями лабораторной культуры коловраток Brachionus calyciflorus Pallas (кл. Rotatoria/Rotifera).

Показателем ОТД служит снижение скорости осветления среды (СОС) коловратками в опытной серии по сравнению с контрольной.

Критерием ОТД является снижение СОС на 50 % и более в опытной серии по сравнению с контрольной за 30 мин экспозиции.

7.6.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.6.2.1 Культура коловраток Brachionus calyciflorus Pallas. Основные характеристики коловраток, источники их получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в Р 52.24.662.

7.6.2.2 Одноклеточные протококковые водоросли (далее - микроводоросли) родов Chlorella и Scenedesmus для кормления коловраток.

Культуру микроводорослей готовят на питательной среде в соответствии с приложением В.

7.6.2.3 Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.6.2.4 Центрифуга лабораторная роторная любого типа.

7.6.2.5 Камера для счета форменных элементов крови и клеточных элементов спинно-мозговой жидкости (Горяева) по ТУ 64-1-816-84 - 1 шт.

7.6.2.6 Пробирки Уленгута ПУ1-8×40 вместимостью 2 см³ по ТУ 9461-008-52876351-2008 - 6 шт.

7.6.2.7 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

7.6.2.8 Стаканы типа В, исполнения 1 по ГОСТ 25336-82 вместимостью 100 см³ - 4 шт.

7.6.2.10 Пипетки Пастера по ТУ 9464-001-52876351-2000 - 2 шт.

7.6.2.12 Пипетки второго класса точности на 1 см³ ГОСТ 29228-91 - 2 шт.

7.6.2.13 Вода водопроводная дехлорированная (отстоянная в течение 5 сут).

Примечание - Допускается применение других типов средств измерений, вспомогательных устройств, в том числе импортных, с аналогичными и лучшими метрологическими и техническими характеристиками.

7.6.3 Подготовка к биотестированию

Для биотестирования используют культуру коловраток в начале стационарной фазы роста (см. 7.5.3).

Перед выполнением биотестирования проводят проверку пригодности культуры коловраток для использования в биотесте по чувствительности к эталонному токсиканту в соответствии с Г.2.5 (приложение Г).

Воду, предназначенную для тестирования, фильтруют через бумажный фильтр «белая лента» для удаления взвеси.

Водную вытяжку из донных отложений готовят согласно Р 52.24.662.

7.6.4 Выполнение биотестирования

7.6.4.1 Общий объём воды и водной вытяжки донных отложений для биотестирования одной пробы составляет 50 см³.

7.6.4.2 Под микроскопом с помощью пипетки Пастера отсаживают по 10 коловраток в каждую пробирку Уленгута вместимостью 2 см³. Избыток попавшей с коловратками воды убирают с помощью фильтровальной бумаги «белая лента».

7.6.4.3 В пробирки Уленгута опытной серии добавляют по 1,0 см³ тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений, в контрольную серию - 1,0 см³ дехлорированной водопроводной воды.

Каждую серию ставят в трех повторностях.

7.6.4.4 В каждую пробирку Уленгута опытной и контрольной серий вносят пипеткой 0,1 см³ суспензии водорослей. Концентрация вносимых водорослей должна быть не ниже 2 млн. клеток/см³. Если плотность водорослей низка, то их концентрируют с помощью лабораторной роторной центрифуги.

7.6.4.5 Для корректности подсчета исходной численности водорослей их вносят в каждую пробирку Уленгута с интервалом времени от 10 до 15 мин. Этот интервал времени необходимо соблюдать и при подсчете микроводорослей в конце биотестирования.

7.6.5 Регистрация численности клеток водорослей

Регистрацию численности водорослей проводят дважды (в начале и в конце биотеста) в каждой пробирке Уленгута вместимостью 2 см³ опытной и контрольной серий. При первом подсчёте учитывают исходное количество клеток водорослей непосредственно после внесения в пробирки Уленгута с коловратками. Второй подсчет проводят в конце эксперимента - по истечении 30 мин.

В каждой пробирке Уленгута подсчёт водорослей ведут в камере Горяева, просчитывая трижды по 10 больших квадратов (увеличение 20×10), расположенных по диагонали камеры. Для расчетов СОС используют среднее значение количества клеток водорослей.

7.6.6 Обработка результатов и оценка токсичности

Токсичность тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений оценивают по изменению величины отклонения СОС опытной серии от контрольной.

Среднее (из повторностей) значение показателя СОС, мм³/(экз.∙мин) рассчитывают в контрольной и опытной сериях по формуле

где СОС - среднее значение показателя скорости осветления среды в опытной или контрольной сериях;

 и  - среднее количество клеток микро вод о рослей в одном большом квадрате камеры Горяева в начале и в конце биотестирования соответственно;

 - среднее количество коловраток в чашке Петри, экз.;

t - экспозиция, мин;

V - объем воды в пробирке Уленгута, см³.

Поскольку при биотестировании объем среды, в котором находятся коловратки (1,1 см³), количество коловраток (10 экз.) и время биотестирования (30 мин) одинаковы во всех сериях, то для сравнения с контрольной серией можно использовать упрощенную формулу

Отклонение показателя СОС А_СОС, % в опытной серии от контрольной определяют по формуле

где СОС₁ и СОС₂ - показатели СОС в опытной и контрольной сериях соответственно, мм³/(экз.∙мин).

Отклонения могут быть положительными (увеличение) и отрицательными (снижение). Если снижение СОС составляет 50 % и более, то это указывает на ОТД тестируемой воды или водной вытяжки донных отложений, если наблюдается увеличение СОС на 50 % и более - на стимулирующее действие.

Результаты биотестирования записывают по форме таблицы Д.8 (приложение Д).

7.7 Метод биотестирования воды с использованием покоящихся яиц коловраток

7.7.1 Принцип метода

Метод основан на установлении острого или хронического токсического действия тестируемой воды по влиянию на выклев коловраток Brachionus calyciflorus Pallas (кл. Rotatoria/Rotifera) из покоящихся яиц.

Показателем токсичности служит снижение выклева коловраток: числа молоди, вышедшей из покоящихся яиц, при экспозиции в тестируемой воде по сравнению с контрольной.

Критерием токсичности служит снижение выклева коловраток из покоящихся яиц на 50 % и более. ОТД определяют при экспозиции 24 ч, ХТД - 72 ч.

7.7.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.7.2.1 Покоящиеся яйца коловраток Brachionus calyciflorus Pallas. Основные характеристики коловраток, источники их получения, условия культивирования и содержания в лаборатории, получения покоящихся яиц изложены в Р 52.24.662.

7.7.2.2 Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.7.2.3 Чашки биологические ЧБН (Петри) диаметром 40 мм по ГОСТ 25336-82 - 9 шт.

7.7.2.4 Весы неавтоматического действия среднего (III) класса точности по ГОСТ Р 53228-2008, максимальная нагрузка не более 500 г, дискретность отсчета 0,001 г.

7.7.2.5 Лампы люминесцентные по ГОСТ 6825-91.

7.7.2.6 Вода водопроводная дехлорированная (отстоянная в течение 5 сут).

7.7.3 Подготовка к биотестированию

Для биотестирования используют покоящиеся яйца коловратки Brachionus calyciflorus Pallas. Рекомендуется использовать покоящиеся яйца, полученные искусственным путем, поскольку точно известны условия их получения (Р 52.24.662). Допускается использовать покоящиеся яйца, собранные в естественных водоемах (прудах, на мелководьях рек), которые идентифицируют согласно (Р 52.24.662).

Проводят проверку пригодности покоящихся яиц и отбор их для эксперимента. Для этого вначале под микроскопом проверяют целостность покрова покоящихся яиц и отбирают покоящиеся яйца с неповрежденной оболочкой.

В чашки Петри диаметром 40 мм приливают 30 см³ дехлорированной водопроводной воды, помещают по 50 - 100 штук отобранных яиц и ставят их под люминесцентные лампы. Через 1 сут подсчитывают количество выклюнувшейся из яиц молоди. Если выклев коловраток превышает 50 %, то покоящиеся яйца считают пригодными для биотестирования.

7.7.4 Выполнение биотестирования

7.7.4.1 Для биотестирования берут либо навеску покоящихся яиц (0,1 - 0,2 мг), прошедших проверку пригодности, либо подсчитанное под микроскопом их количество.

7.7.4.2 При любом из вариантов для биотестирования отсчитывают под микроскопом по 50 - 100 шт. яиц коловраток и помещают в чашки Петри диаметром 40 мм.

7.7.4.3 В опытную серию добавляют по 2 см³ тестируемой воды, в контрольные серии - по 2 см³ дехлорированной водопроводной воды и воды из фонового «условно чистого» створа.

7.7.4.4 Каждую серию ставят в трех повторностях.

7.7.4.5 Все взятые в эксперимент чашки Петри помещают под люминесцентные лампы.

7.7.5 Регистрация показателя выклева коловраток

Учет выклюнувшейся из покоящихся яиц молоди коловраток проводят строго через 24, 48 и 72 ч под микроскопом при увеличении 2×14. Выклюнувшаяся молодь подвижна, легко регистрируется.

Молодь подсчитывают и отсаживают.

7.7.6 Обработка результатов и оценка токсичности

Оценку токсичности проводят по показателю выклева молоди коловраток в опытной серии по сравнению с контрольной.

По результатам биотестирования вначале сравнивают показатели выклева молоди из покоящихся яиц в контрольных сериях К₁ и К₂. Если в К₂ отклонение выклева коловраток по сравнению с К₁ не превышает 25 % (вода контрольной серии К₂ не токсична), то результаты в опытной серии сравнивают с контролем на воде из фонового створа. Если в К₂ снижение выклева коловраток по сравнению с контрольной серией К₁ составляет 25 % и более, то воду фонового створа оценивают как токсичную и результаты опытной серии сравнивают с контрольной серией на водопроводной воде.

Отклонение показателя выклева молоди коловраток выклева А_в.к, %, в опытной серии по сравнению с контрольной проводят по формуле

где  и  - средние значения (из повторностей) количества выклюнувшейся молоди в опытной и контрольной сериях соответственно, экз.

Если снижение показателя выклева молоди из покоящихся яиц в опытной серии от контрольной составляет 50 % и более, то воду оценивают как токсичную. При этом если снижение выклева молоди на 50 % и более отмечено через 1 сут экспозиции, то тестируемую воду оценивают как проявляющую ОТД. При снижении выклева молоди на 50 % и более, отмеченного при экспозиции 48 или 72 ч, тестируемую воду оценивают как проявляющую ХТД.

Результаты биотестирования записывают по форме таблицы Д.9 (приложение Д).

7.8 Метод биотестирования нативных донных отложений на личинках хирономид

7.8.1 Принцип метода

Метод основан на установлении ОТД или ХТД тестируемых донных отложений по влиянию на личинок хирономид видов Chironomus plumosus, Ch. dorsalis, Ch. riparius, Ch. semireductus (класс Insecta, omp. Diptera, сем. Chironomidae) или других видов в кратковременных или длительных экспериментах.

Влияние на личинок хирономид устанавливают по различию показателей токсичности в опытной и контрольной сериях.

Показателями токсичности служат:

- гибель личинок хирономид, повреждения, угрожающие жизни, изменение метаморфоза (числа и сроков вылета взрослых комаров).

Дополнительно могут быть использованы другие показатели: развитие морфологических повреждений, изменение линейных размеров тела, замедление превращения личинок хирономид в куколки, изменение поведенческих реакций.

Критерием токсичности служат отклонения в показателях токсичности на 25 % и более между результатами в опытной серии (пробе донных отложений, отобранной на исследуемом участке) и контрольной серии (пробе, отобранной на фоновом створе водного объекта).

ОТД устанавливают при экспозиции 96 ч. При более длительной экспозиции, до 30 сут, устанавливают ХТД.

Биотестирование опытной и контрольной серий должно быть проведено: 1) на личинках хирономид одного и того же вида и 2) на донных отложениях одного и того же типа.

7.8.2 Необходимые материалы, оборудование, реактивы

7.8.2.1 Популяция личинок хирономид видов Chironomus plumosus, Ch. dorsalis, Ch. riparius, Ch. semireductus. Основные характеристики личинок хирономид, источники их получения, условия культивирования и содержания в лаборатории изложены в РД 52.24.635.

7.8.2.2. Микроскоп инструментальный ИМ 100×50, А по ГОСТ 8074-82 или МБС-10 или другой с аналогичными характеристиками.

7.8.2.3 Холодильник бытовой, поддерживающий температуру от 2 °С до 6 °С

7.8.2.4 Термометр лабораторный по ТУ 25-2021.003-88

7.8.2.5 Весы неавтоматического действия среднего (III) класса точности по ГОСТ Р 53228-2008, максимальная нагрузка не более 500 г, дискретность отсчета 0,001 г.

7.8.2.6 Фильтры бумажные обеззоленные «белая лента» по ТУ 6-09-1678-86.

7.8.2.7 Чашки биологические ЧБН (Петри) диаметром 100 мм по ГОСТ 25336-82 - 9 шт.

7.8.2.8 Пинцеты по ГОСТ 21241-89 - 2 шт.

7.8.2.9 Стаканы типа В, исполнения 1, ТХС по ГОСТ 25336-82 вместимостью: 50 см³ - 2 шт., 1000 см³ - 1 шт.

7.8.2.10 Колбы конические плоскодонные по ГОСТ 25336-82 вместимостью 250 см³ - 3 шт., 500 см³ - 3 шт.

7.8.2.11 Стеклянная палочка диаметром 4 мм и длиной 1500 мм по ГОСТ 27460-87 - 1 шт.

7.8.2.12 Дрожжи хлебопекарные прессованные по ГОСТ Р 54731-2011.

7.8.3 Подготовка к биотестированию

Биотестирование проводят на нативной (необработанной) пробе донных отложений, подготовленной в соответствии с РД 52.24.609.

Популяцию личинок хирономид видов Chironomus plumosus, Ch. dorsalis, Ch. riparius, Ch. semireductus хранят в холодильнике при температуре от 4 °С до 15 °С. Перед биотестированием проверяют на пригодность личинок хирономид по их состоянию в соответствии с РД 52.24.635.

Непосредственно перед биотестированием пинцетом отбирают из имеющейся популяции наиболее активных особей размером от 3 до 5 мм, помещают их в чашку Петри с влажной фильтровальной бумагой и оставляют при комнатной температуре.

Подготавливают две серии эксперимента: опытную - на пробе донных отложений, отобранной на исследуемом участке и контрольную - на пробе, отобранной на фоновом створе водного объекта. В обеих сериях необходимо использовать донные отложения одного и того же типа.

Пробы донных отложений подготавливают следующим образом. Взвешивают в чашках Петри по 100 г донных отложений для опытной и контрольных серий (по 2 повторности для каждой серии), добавляют воду из фонового створа и оставляют при комнатной температуре на 2 ч для отстаивания. Необходимая высота слоя донных отложений в чашке Петри должна составлять от 1 до 2 см, а слоя воды после отстаивания от 1 до 3 мм (для обеспечения оптимальных условий жизнедеятельности личинок хирономид).

7.8.4 Выполнение биотестирования

В каждую чашку Петри с донными отложениями помещают по 10 особей популяции личинок хирономид видов Chironomus plumosus, Ch. dorsalis, Ch. riparius, Ch. semireductus, закрывают чашки и сразу же начинают наблюдения за выживаемостью, развитием повреждений и поведением. Следят за тем, чтобы уровень воды над осадком составлял не менее 3 мм, доливая ее из соответствующих проб воды, которые в течение эксперимента хранят в холодильнике. Погибших личинок хирономид подсчитывают и удаляют пинцетом, в том числе и из грунта.

В течение 96 ч (кратковременный эксперимент) личинок хирономид не кормят.

7.8.5 Регистрация нарушений жизнедеятельности и гибели личинок хирономид

Проявлением ОТД донных отложений (кратковременные эксперименты до 96 ч) у личинок хирономид является первоначальное усиление двигательной активности, которое сменяется ее снижением и последующим параличом.

Гибель личинок хирономид устанавливают по следующим признакам. Погибшими считают личинок хирономид, потерявших подвижность и не реагирующих на прикосновение стеклянной палочкой. Погибшие особи или неестественно вытянуты, или свернуты в клубок, иногда зигзагообразно изогнуты. Факт гибели можно уточнить под микроскопом: цвет покровов бледнеет или меняется с ярко-красного на различные оттенки зеленого, коричневого, темно-красного.

Построенные в токсических условиях домики не прочные, личинки хирономид часто покидают их и погибают.

В кратковременных экспериментах данные наблюдений вначале регистрируют через 30 мин экспозиции, а затем через 1, 2, 4, 6, 24, 48, 72, 96 ч. Отклонения в поведении личинок хирономид в опытной серии по сравнению с контрольной записывают в произвольной форме.

В длительных экспериментах (экспозиция от 4 до 30 сут) также наблюдается гибель личинок хирономид на разных стадиях метаморфоза, замедление роста, ускорение или замедление сроков окукливания и вылета взрослой особи, «кровоизлияний» в крыло, появление уродливых взрослых особей (нарушения в брюшных сегментах, конечностях, антеннах).

7.8.6 Обработка результатов и оценка токсического действия воды и донных отложений

Оценка токсического действия - экспертная, поэтому специалист должен учитывать особенности жизнедеятельности личинок хирономид, которые изложены в РД 52.24.635 и в [4]. При действии токсичных химических веществ у личинок хирономид выявляются различные симптомы отравления, от нарушения поведенческих реакций до гибели. Перед гибелью личинки хирономид всплывают на поверхность; в благоприятных условиях среды они обычно зарываются в донные отложения.

Следует учитывать, что в неблагоприятных условиях рост личинок хирономид замедляется, тогда как в благоприятных они быстро увеличивают биомассу. На темпы роста существенно влияет температура окружающей среды. При высоких температурах темп роста увеличивается. Например, в естественных условиях личинка Ch. dorsalis при температурах 15 °С; 20 °С; 25 °С; 30 °С достигает массы тела 12 мг за разное время: соответственно за 17; 15; 13; 9 сут [4].

Если в опытной серии выявляют ОТД, эксперимент прекращают. Если в пробах ОТД не выявляют, эксперимент продолжают до 30 сут для выявления возможного ХТД.

Данные и результаты биотестирования записывают по форме таблицы Д.10 (приложение Д).

8 Дополнительные методы биотестирования воды и донных отложений водотоков и водоемов

8.1 Метод биотестирования воды на цериодафниях

Влияние тестируемой воды оценивают по изменению выживаемости и плодовитости цериодафний Ceriodaphnia affinis Lilljeborg при экспозиции в тестируемой воде по сравнению с контролем. ОТД, пОТД и ХТД тестируемой воды на цериодафний устанавливают по аналогии с методикой на дафниях, но при более короткой экспозиции: в остром опыте, длительностью до 48 ч, и хроническом, примерно до 7 сут. Условия разведения, содержания цериодафний и проведения эксперимента описаны в руководстве [6].

8.2 Метод биотестирования воды на рыбах

Метод основан на оценке влияния тестируемой воды на выживаемость односуточной молоди аквариумных рыб гуппи Poecilia reticulata Peters. ОТД тестируемой воды устанавливают по снижению выживаемости рыб на 50 % и более при экспозиции в тестируемой воде в течение 96 ч по сравнению с контролем. Условия разведения, содержания рыб и проведения эксперимента описаны в [6].

8.3 Метод биотестирования воды и донных отложений на популяциях гидробионтов

Метод основан на установлении ОТД, пОТД или ХТД проб воды и донных отложений. Для биотестирования используют лабораторные культуры микроводорослей, зоопланктона (ракообразных, инфузорий, коловраток) и рыб.

Показателем токсичности служит коэффициент регенерации популяции, рассчитываемый по гибели (среднее число погибших особей) и количеству молоди (среднее количество появившейся молоди) в ходе одного эксперимента.

Длительность эксперимента зависит от биологических особенностей вида тест-объекта. Предпочтительно использовать организмы с коротким жизненным циклом, способные давать новые поколения от 1 до 10 сут (Р 52.24.695).

8.4 Метод оценки токсического влияния фитоценозов планктона на формирование качества вод

Некоторые виды синезеленых водорослей, которые массово развиваются при «цветении» водохранилищ, в ходе жизнедеятельности образуют токсины, которые приводят к токсичности воды водоемов [7] - [10].

Для оценки токсического влияния природных фитоценозов на формирование качества вод проводят биотестирование проб воды цветущего водоема и проб биомассы водорослей на гидробионтах, охватывающих основные трофические уровни водной экосистемы (например, на водорослях, ракообразных и рыбах) и при оценке учитывают содержание загрязняющих веществ по данным сети наблюдений Росгидромета (Р 52.24.809).

9 Выбор методов биотестирования и оценка токсичности проб воды и донных отложений водотоков и водоемов

9.1 Наиболее достоверные результаты получают при использовании набора биотестов на тест-объектах - гидробионтах разного трофического уровня.

9.2 Различные тест-объекты обладают разной чувствительностью к загрязняющим веществам, в связи с чем использование набора биотестов позволяет выявлять токсическое действие более широкого перечня загрязняющих веществ в воде и донных отложениях водотоков и водоемов.

9.3 Обязательным элементом набора биотестов в системе биотестирования токсичности воды и донных отложений водотоков и водоемов должны быть наиболее апробированные биотесты: на водорослях, дафниях, инфузориях. Эти биотесты позволяют в большинстве случаев уловить присутствие в воде даже относительно небольших концентраций загрязняющих веществ, особенно если эти вещества отнесены к 1 - 2 классам опасности для водных объектов рыбохозяйственного значения.

9.5 Для режимного мониторинга рекомендуется использовать набор из трех биотестов основного перечня и при необходимости - 1 - 2 из дополнительного. Целесообразно также использовать не одну, а несколько тест-реакций, поскольку их чувствительность к загрязнению не одинакова.

Рекомендуемые наборы биотестов представлены в таблице 5.

Таблица 5 - Наборы биотестов для режимного мониторинга

9.6 Для оперативного мониторинга рекомендованы экспресс-методы: биотест по хемотаксису инфузорий и биотест по СОС коловратками.

Общая оценка токсичности пробы воды или донных отложений по результатам биотестирования по набору биотестов является экспертной. Заключение делают «по наихудшему результату» (принципу, принятому в водной токсикологии): при наличии в одном из использованных биотестов токсичности, независимо от результатов других биотестов, пробу считают токсичной.

10 Оценка токсического загрязнения водного объекта

Оценку токсического загрязнения проводят по данным съемок на створах наблюдений сети Росгидромета или на отдельных участках водного объекта, используя таблицу 6. По доле проб, в которых обнаружена токсичность, оценивают степень токсического загрязнения водного объекта или его участка.

По наличию токсичности в различных пробах донных отложений судят о расположении участков накопления токсичных загрязняющих веществ в водном объекте, а также о зонах влияния источников загрязнения.

Таблица 6 - Оценка токсического загрязнения водного объекта (участка) по результатам биотестирования проб воды

11 Условия приемлемости результатов биотестирования

Условия приемлемости результатов биотестирования для всех методов биотестирования сводятся к соблюдению требований к отбору проб, хранению и транспортировке, а также требований к содержанию тест-объектов в культуре и к чувствительности по данным проверки пригодности тест-объектов, соблюдению процедур выполнения биотеста.

12 Требования к технике безопасности и квалификации исполнителей

Работы по биотестированию выполняют лица с высшим или средним профессиональным образованием, освоившие методы водной токсикологии, методы полевых и лабораторных исследований с помощью биотестов и прошедшие инструктаж по технике безопасности при работе на водных объектах и в химических лабораториях с вредными веществами.

Приложение А

(справочное)

Общая схема и этапы работ по определению токсичности воды и донных отложений методами биотестирования

Рисунок А.1

Приложение Б

(рекомендуемое)

Форма записи характеристик проб воды и донных отложений

Приложение В

(справочное)

Приготовление питательной среды для культивирования водорослей и для биотестирования

В.1 Средства измерений, вспомогательные устройства, реактивы

В.1.1 Колбы мерные 2-го класса точности исполнения 2, 2а по ГОСТ 1770-74 вместимостью: 100 см³ - 1 шт., 1000 см³ - 3 шт.

В.1.2 Пипетка с одной отметкой 2-го класса точности исполнения 2 по ГОСТ 29169-91 вместимостью 1 см³ - 1 шт.

В.1.3 Аммоний ванадиево-кислый мета по ГОСТ 9336-75, ч.д.а.

В.1.4 Кислота борная по ГОСТ 18704-78.

В.1.5 Калий азотнокислый по ГОСТ 4217-77, х.ч.

В.1.6 Калий углекислый по ГОСТ 4221-76, ч.д.а.

В.1.7 Калий фосфорнокислый однозамещенный по ГОСТ 4198-75, ч.д.а.

В.1.8 Кальций азотнокислый по ТУ 6-09-1013-76, ч.д.а.

В.1.9 Кислота борная ГОСТ 9656-75, х.ч.

В.1.10 Магний сернокислый 7-водный по ГОСТ 4523-77, ч.д.а.

В.1.11 Марганец хлористый 4-водный по ГОСТ 616-75.

В.1.12 Молибдена оксид по ТУ 6-09-4471-77, ч.д.а.

В.1.13 Цинк сернокислый 7-водный по ГОСТ 4174-77, ч.д.а.

В.1.14 Вода дистиллированная по ГОСТ 6709-72.

В.2 Приготовление раствора микроэлементов

В мерную колбу вместимостью 100 см³ приливают 10 см³ дистиллированной воды, растворяют навески каждого реактива согласно таблице В.1 и доводят объем до метки дистиллированной водой.

Полученный раствор хранят в холодильнике до помутнения.

В.3 Приготовление исходного раствора для культивирования водорослей

В мерную колбу вместимостью 1 дм³ приливают 100 см³ дистиллированной воды, растворяют навески каждого реактива согласно таблице В.2, затем добавляют 1 см³ раствора микроэлементов и доводят объем до метки дистиллированной водой.

Полученный раствор хранят в холодильнике до помутнения.

В.4 Приготовление исходного раствора для биотестирования

В мерную колбу вместимостью 1 дм³ приливают 100 см³ дистиллированной воды, растворяют навески каждого реактива согласно таблице В.3, затем добавляют 1 см³ раствора микроэлементов и доводят объем до метки дистиллированной водой.

Полученный раствор хранят в холодильнике до помутнения.

В.5 Приготовление раствора для культивирования водорослей

В мерную колбу вместимостью 1 дм³ приливают 100 см³ дистиллированной воды и 1 см³ раствора микроэлементов и доводят объем до метки дистиллированной водой.

Таблица В.1 - Состав раствора микроэлементов для питательной среды

Таблица В.2 - Растворы реактивов питательной среды для культивирования водорослей

Таблица В.3 - Растворы реактивов питательной среды для биотестирования

Приложение Г

(рекомендуемое)

Проверка пригодности тест-объектов для биотестирования

Г.1 Средства измерений, вспомогательные устройства, реактивы

Г.1.1 Колбы мерные 2-го класса точности исполнения 2, 2а по ГОСТ 1770-74 вместимостью: 100 см³ - 12 шт., 250 см³ - 6 шт; 500 см³ - 6 шт.

Г.1.2 Пипетка с одной отметкой 2-го класса точности исполнения 2 по ГОСТ 29169-91 вместимостью 2 см³, 5 см³, 10 см³, 20 см³ - 4 шт.

Г.1.3 Колбы конические типа Кн исполнения 2 по ГОСТ 25336-82 вместимостью 250 см³ - 12 шт., 500 см³ - 6 шт.

Г.1.4 Весы неавтоматического действия среднего (III) класса точности по ГОСТ Р 53228-2008, максимальная нагрузка не более 500 г, дискретность отсчета 0,001 г.

Г.1.5 Калий двухромовокислый (K₂Cr₂O₇) по ГОСТ 4220-75.

Г.1.6 Вода дистиллированная по ГОСТ 6709-72.

Г.1.7 Вода водопроводная дехлорированная.

Г.2 Проверка пригодности тест-объектов для биотестирования

Г.2.1 Перед выполнением биотестирования проверяют пригодность тест-объектов по их чувствительности к эталонному токсиканту. При систематическом выполнении работ по биотестированию такая проверка проводится не реже одного раза в месяц.

В случае, когда показателем токсичности служит выживаемость (гибель) тест-объектов, определяют ЛК₅₀ за 24 ч экспозиции, т.е. концентрацию эталонного токсиканта, при которой погибает 50 % особей тест-объекта.

Для водорослей, у которых показателем токсичности служит скорость роста (увеличение численности клеток), определяют эффективную концентрацию эталонного токсиканта, вызывающую снижение численности водорослей на 50 % (ЭК₅₀) по сравнению с контролем за 48 ч экспозиции.

Как показывает практика токсикологических исследований, показатели ЛК₅₀ и ЭК₅₀ взятой в эксперимент выборки культуры тест-объекта могут быть установлены при нескольких концентрациях эталонного токсиканта, находящихся в определенном, характерном для каждого тест-объекта, узком диапазоне.

Г.2.2 В качестве эталонного токсиканта чаще всего используют калий двухромовокислый (K₂Cr₂O₇).

Для установления чувствительности тест-объекта готовят исходный раствор K₂Cr₂O₇ с концентрацией 10 г/дм³. Для этого взвешивают 5 г K₂Cr₂O₇, переносят в мерную колбу вместимостью 500 см³ и растворяют в небольшом количестве дистиллированной воды. Затем доводят содержимое колбы до метки дистиллированной водой и тщательно перемешивают. Приготовленный исходный раствор K₂Cr₂O₇ перед использованием выдерживают в течение двух часов. Срок хранения исходного раствора калия двухромовокислого в темной склянке с притертой пробкой - не более 6 месяцев.

Далее готовят рабочий раствор K₂Cr₂O₇ с концентрацией 0,05 г/дм³ (50 мг/дм³). Для этого в мерную колбу вместимостью 500 см³ приливают 2,5 см³ исходного раствора K₂Cr₂O₇ 10 г/дм³ пипеткой вместимостью 5 см³, доводят до метки дистиллированной водой и тщательно перемешивают. Рабочий раствор хранению не подлежит.

Г.2.3 Показатель ЭК₅₀ за 48 ч для зеленых водорослей должен находиться в диапазоне концентраций K₂Cr₂O₇ от 1,3 до 2,5 мг/дм³. Для установления ЭК₅₀ готовят серию градуировочных растворов калия двухромовокислого с концентрациями 0,25; 0,50; 1,0; 1,5; 2,0; 2,5 мг/дм³ следующим образом. В мерные колбы вместимостью 250 см³ приливают соответственно по 1,25; 2,5; 5,0; 7,5; 10,5; 12,5 см³ рабочего раствора K₂Cr₂O₇ с концентрацией 50 мг/дм³, используя пипетки вместимостью 2, 5, 10 и 20 см³. В каждую колбу приливают до метки дистиллированную воду и тщательно перемешивают полученные растворы.

В конические колбы вместимостью 250 см³ приливают мерной колбой вместимостью 100 см³ по 100 см³ каждого градуировочного раствора, 0,1 см³ питательной среды, суспензию водорослей в объеме, чтобы численность клеток в каждой из трех колб находилась в пределах от 25×10³ до 50×10 клеток/см³ и проводят биотестирование в соответствии с 7.1. Каждую концентрацию K₂Cr₂O₇ берут в двух повторностях. В качестве контроля используют соответствующую питательную среду. Через 48 ч определяют численность водорослей и устанавливают ЭК₅₀ графическим методом с использованием пробитного анализа в соответствии Р 52.24.662.

Если значение показателя ЭК₅₀ выходит за рамки установленного диапазона концентраций эталонного токсиканта, повторяют эксперимент с использованием другой культуры водорослей.

Г.2.4 Для установления пригодности к биотестированию дафний и цериодафний используют те же концентрации эталонного токсиканта, что и для водорослей, однако рабочий и градуировочные растворы K₂Cr₂O₇ готовят на дехлорированной водопроводной воде. В качестве контроля используют дехлорированную водопроводную воду. Биотестирование на этих растворах проводят (каждый в трех повторностях) в течение 24 ч и на основании полученных результатов рассчитывают ЛК₅₀ за 24 ч с помощью графического метода и пробитного анализа в соответствии с Р 52.24.662. Показатель ЛК₅₀ за 24 ч для дафний должен находиться в диапазоне концентраций K₂Cr₂O₇ от 0,9 до 2,0 мг/дм³, для цериодафний - от 1,2 до 1,9 мг/дм³.

Если значение показателя ЛК₅₀ выходит за рамки установленного диапазона концентраций эталонного токсиканта, повторяют эксперимент с использованием организмов из других культур.

Г.2.5 Для установления пригодности к биотестированию парамеций и коловраток готовят градуировочные растворы эталонного токсиканта K₂Cr₂O₇ в концентрациях 0,025; 0,050; 0,075; 0,100; 0,200; 0,250 мг/дм³ следующим образом. Из исходного раствора K₂Cr₂O₇ с концентрацией 10 г/дм³ готовят рабочий раствор с концентрацией 5 мг/ дм³: в мерную колбу вместимостью 500 см³ приливают 0,5 см³ исходного раствора и доводят до метки дехлорированной водопроводной водой. Далее берут 6 мерных колб вместимостью 100 см³, приливают в каждую колбу соответственно по 0,5; 1,0; 1,5; 2,0; 4,0 и 5,0 см³ рабочего раствора с концентрацией 5 мг/дм³ и доводят до метки дехлорированной водой, получая градуировочные растворы в концентрациях 0,025; 0,050; 0,075; 0,100; 0,200; 0,250 мг/дм³. Эти растворы используют для установления ЛК₅₀ при экспозиции 24 ч для культуры парамеций или коловраток при биотестировании в соответствии с методикой. В качестве контроля используют дехлорированную водопроводную воду. Расчет показателя ЛК₅₀ производят графическим методом с использованием пробитного анализа по Р 52.24.662. Показатель ЛК₅₀ за 24 ч для парамеций и коловраток должен находиться в диапазоне концентраций K₂Cr₂O₇ от 0,075 до 0,250 мг/дм³.

Если значение показателя ЛК₅₀ выходит за рамки установленного диапазона концентраций эталонного токсиканта, повторяют эксперимент с использованием организмов из других культур.

Приложение Д

(рекомендуемое)

Формы записи данных и результатов биотестирования проб воды

Таблица Д.1 - Данные и результат биотестирования проб воды на водорослях

Таблица Д.2 - Данные и результаты биотестирования проб воды на дафниях для определения ОТД и пОТД

Таблица Д.3 - Данные и результаты биотестирования проб воды на дафниях для определения ХТД

Таблица Д.4 - Данные биотестирования проб воды на инфузориях

Таблица Д.5 - Результаты биотестирования проб воды или водных вытяжек донных отложений на инфузориях

Таблица Д.6 - Результаты биотестирования проб воды по реакции хемотаксиса инфузорий

Таблица Д.7 - Результаты биотестирования проб воды или водной вытяжки донных отложений по показателям гибели и плодовитости коловраток

Таблица Д.8 - Результаты биотестирования проб воды или водной вытяжки донных отложений по показателю пищевой активности коловраток

Таблица Д.9 - Результаты биотестирования проб воды с использованием покоящихся яиц коловратки

Таблица Д.10 - Результаты биотестирования нативной («необработанной») пробы донных отложений на личинках хирономид

Приложение Е

(справочное)

Алгоритм статистической обработки результатов биотестирования

Алгоритм расчета достоверности отклонений показателя токсичности от контроля.

Определение достоверности отклонений от контроля осуществляют методами вариационной статистики, используя формулы:

1) среднее арифметическое значение показателя

где V_i - отдельные значения показателя;

n - количество повторностей.

2) среднее квадратическое отклонение

3) ошибку среднего арифметического

4) критерий достоверности разности

где М_к и М_оп - сравниваемые средние величины в контроле и опыте;

m_к² и m_оп² - квадраты ошибок в контроле и опыте.

Полученные результаты сравнивают с табличным значением критерия Стьюдента (t_st) при степени свободы (n_к + n_оп-2) по таблице Е.1.

Если рассчитанное значение t_d больше или равно значению стандартного критерия Стьюдента (t_d ≥ t_st), то отклонение результатов биотестирования от контроля достоверно. И тогда можно сделать вывод о том, что испытываемая вода оказывает токсическое действие.

Таблица Е.1 - Критические значения критериев Стьюдента t_st при уровне значимости 0,05

Библиография

[1] Водный кодекс Российской Федерации от 3 июня 2006 г. № 74-ФЗ (в редакции от 31.10.2016, с изменениями от 26 июля 2017).

[2] Зенин А.А., Белоусова Н.В. Гидрохимический словарь, - Л.: Гидрометеоиздат, 1988. - 239 с.

[3] Реймерс Н.Ф. Популярный биологический словарь. М.: Наука, 1991. - 540 с.

[4] Никаноров А.М., Хоружая Т.А. Экология. Для студентов вузов и специалистов - экологов. М.: Издательство «ПРИОР», 2001. - 304 с.

[5] Константинов А.С. Биология хирономид и их разведение // Тр. Саратовского отделения ВНИОРХ. 1958. Т. 5. - 364 с.

[6] Руководство по определению методом биотестирования токсичности вод, донных отложений, загрязняющих веществ и буровых растворов. - М.: РЭФИА, НИА-Природа, 2002. - 118 с.

[7] Бакаева Е.Н., Никаноров А.М. Гидробионты в оценке качества вод суши. М.: Наука, 2006. - 236 с.

[8] Матишов Г.Г., Ковалева Г.В. «Цветение» воды в водоемах юга России и сбои в водоснабжении (на примере г. Волгодонска) // Вестник ЮНЦ РАН. 2010. Т. 6, № 1. - С. 71 - 79.

[9] Румянцев В.А, Крюков Л.Н., Поздняков Ш.Р., Жуковский А.В. Цианобактериальное «цветение» воды - источник проблем природопользования и стимул инноваций в России //Инженерный вестник Дона. Электронный научный журнал, 2012, № 4. - С. 221 - 227.

[10] Хоружая Т.А., Никаноров А.М. Эвтрофирование и токсичность синезеленых водорослей как проявление глобальных экологических проблем /Вода и водные ресурсы: Системообразующие функции в природе и экономике. Сб. науч. трудов /отв. ред. В.Г. Пряжинская. Новочеркасск: ЮРГТУ (НПИ), 2012. - С. 340 - 344.

Лист регистрации изменений